0引言    杏仁核与学习记忆、情绪、情感密切相关［1］，而且参与精神分裂症、抑郁、癫痫和创伤后应激障碍等多种神经系统疾病的病理过程［2-3］. 然而杏仁核深藏于大脑深部，被复杂精细的神经结构包绕［4］，很难直接探测到杏仁核神经元的活动. 脑片是研究杏仁核功能比较理想的标本. 脑片上记录神经细胞的活动方式主要有膜片钳、传统的细胞内和场电位记录，前两者对仪器设备要求较高，而场电位记录对设备要求相对简单，并可以反映神经细胞的功能状态，易于推广. 我们采用国内的设备系统，制备杏仁核脑片，在脑片上记录场电位,观察其药理学特性并引导杏仁核的长时程增强（longterm potentiation，LTP），以探讨杏仁核场电位的记录及其应用.    1材料和方法    1.1材料健康SD大鼠24只，雄性，体质量200～250 g（福建医科大学实验动物中心），所有动物均在12 h光照/黑暗周期环境中饲养，自由摄食及饮水. D，L2氨基5磷酸基戊酸(APV), 氰基2硝基喹啉2，3二酮(CNQX),谷氨酸(美国Sigma公司)；微电极放大器,RM 6240数据采集系统（成都仪器厂），其余化学产品均为国产分析纯.    1.2方法    1.2.1杏仁核脑片制备将SD大鼠以氟烷麻醉后断头，迅速取脑，放置在低于4℃的冰冷人工脑脊液中并进行修块. 人工脑脊液中各种离子成分及其浓度(mmol/L)为：NaCl 124，KCl 3.0，CaCl2 1.5，MgCl2 1.5，NaH2PO3 1.25，NaHCO3 25,葡萄糖11. 人工脑脊液始终充以950 mL/L O2和50 mL/L CO2，pH7.2～7.4. 用振动切片机把含有杏仁核或海马的大脑部分切成脑片（横切面），厚度500 μm. 脑片实验记录前在常温人工脑脊液中孵育至少1 h.    1.2.2杏仁核脑片场电位记录将脑片移至界面型记录槽(自制)，通过尼龙网与槽内人工脑脊液接触，以1～2 mL/min持续灌流脑片,脑脊液温度控制在(30±1)℃，用950 mL/L O2和50 mL/L CO2混合气体弥散在脑片周围. 在解剖显微镜下将双极不锈钢刺激电极置于外囊，记录微电极置于基底外侧杏仁核(basolateral amygdale, BLA)区，其尖端置于脑片表面下约200 μm处. 刺激电极与记录部位之间的距离约为2 mm. 微电极内充灌3 mol/L NaCl溶液，阻抗为2～5 MΩ. 场电位经微电极放大器放大后，输出信号用数据采集系统RM6240进行信号的记录、分析和处理. 场电位记录基线稳定20 min后才开始下一步的实验. 场电位的斜率用平均基础值标准化. 常规刺激的单相方波信号由RM6240的程控刺激器产生. 刺激方波的波宽为0.1 ms，频率为0.1 Hz，并调整刺激强度使突触反应等于最大突触电位的一半. LTP的引导应用两串频率为100 Hz的高频刺激，每串持续1 s，串间隔为10 min. 记录海马场电位时刺激电极放置于海马（cornu ammonis 1, CA1）区的Schafer侧支通路上，记录电极位于海马CA1区.    1.2.3药物加入实验过程中应用的药物均加入到灌流脑片的人工脑脊液中.    统计学处理:采用SPSS10.0统计分析软件进行数据录入和整理，实验数据用x±s表示，组间采用方差分析. P